流式细胞仪标本制备的原理及步骤
免疫荧光技术(Immunofluorescence technique)又称荧光抗体技术,是标记免疫技术中发展最早的一种。流式细胞仪标本制备的原理:活细胞表面保留有较完整的抗原或受体,先用特异性鼠源性单克隆抗体与细胞表面相应抗原结合,再用荧光标记的第二抗体结合,根据所测定的荧光强度和阳性百分率即可知相应抗原的密度和分布。
活细胞免疫荧光技术-流式细胞仪标本的制备
一、实验材料:细胞样品
二、试剂、试剂盒:兔血清、第二抗体、单克隆抗体、FCS-RPMI1640 DPBS
三、仪器、耗材:玻璃管、塑料管、离心机、荧光显微镜
四、流式细胞仪标本的制备具体步骤:
1、收集细胞。上皮细胞需要蛋白酶消化,然后收集。加PBS或者流式洗液1ml,振荡,1400rpm离心5min,弃上清。
2、染表型悬浮细胞于100ul体积,细胞浓度约为或者小于1X10^6,加入流式染色抗体。按照说明书用量或者减半(根据经验),分出一管作为同型。
3、4℃,避光30min,用PBS洗一遍,1400rpm离心5min,弃上清。
4、破膜破膜剂以BDpharmingen破膜剂为例,加300ul,4℃,避光30min以现配的破膜洗液1ml洗一遍。1400rpm离心5min,弃上清。
5、胞内染色加入流式抗体4℃,避光30min。用破膜洗液1ml洗一遍,1400rpm离心5min,弃上清。
6、加入200ul1~2%多聚甲醛4℃避光保存。一般情况下,可直接把抗体加入到弃上清后的残留液里(体积大概为50ul左右)。
五、流式细胞仪标本制备注意事项:
1、整个操作在4℃下进行,洗涤液中加有比常规防腐剂量高10倍的NaNO3,上述实验条件是防止一抗结合细胞膜抗原后发生交联、脱落;
2、洗涤要充分,以避免游离抗体封闭二抗与细胞膜上一抗相结合,出现假阴性;
3、加适量正常兔血清可封闭某些细胞表面免疫球蛋白Fc受体,降低和防止非特异性染色。
4、细胞活性要好,否则易发生非特异性荧光染色。
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